Získání a zpracování obrazu v mikroskopii
Transkript
Mikroskopické metody v biomedicíně 14. – 18. října 2013 pondělí 8:30-9:00 Registrace účastníků 9.00 9.45 10.00 10.45 12.00 12.45 12.45 14.00 14.00 14.45 středa čtvrtek x x x Fyzika mikroskopie v procházejícím Mikroskopické sledování pochodů v živých Obraz v transmisním elektronovém světle systémech, přehled technik: FRAP, mikroskopu, tomografie a EELS FLAP, FLIP, BRET, FLIM, PRIM, FRET, FCS, LCS cytometrie Prof. Plášek Prof. Hozák Dr. Benada Základní metody zpracování obrazu Superrezoluční světelná mikroskopie Skenovací elektronový mikroskop; záznam obrazu v el. mikroskopech Korelativní mikroskopie Prof. Plášek Prof. Hozák Dr. Benada Ing. Nebesářová káva káva káva pátek x Praktika (3 skupiny): 3. sled 9.00-10.45 Pokračování z minulého dne Doc. Hozman Mikroskop a jeho součásti, formování obrazu, optické aberace, typy objektivů 10.45 11:00 11.00 11.45 úterý Dr.Gerla (1)/ Dr. Radochová, Dr. Lhotáková, Mgr. Kubínová (2)/ Dr. Janáček, Mgr. Čerňavský, Dr. Čapek, Dr. Kubínová (3) káva káva Formování kontrastu u mikroskopie FRET a FRAP detailně v procházejícím světle, matematické metody zvýšení kvality obrazu, dekonvoluce Prof. Plášek Doc. Staněk Fluorescenční mikroskopie a Sondová mikroskopie v biologii (AFM) imunoznačení Příprava preparátů pro EM chemickou cestou Stereologické metody: vzorkování, Měření trojrozměrných měření objemu, počtu, povrchu a délky obrazových dat metodami mikroskopických struktur analýzy obrazu a stereologie Ing. Nebesářová Fyzikální metody v přípravě preparátů Dr. Kubínová Firemní prezentace – Leica, Nikon, Zeiss Prof. Hozák Ing. Nebesářová KRD lunch workshop Multidimensionální laserová konfokální mikroskopie – principy a využití Prof. Hozák Demonstrace/praktika (5 skupin) 1) seřízení mikroskopu - Köhlerovo osvětlení 2) fázový kontrast 14.45 3) interferenční kontrast 4) výběr imunoznačení cca 17.00 5) fluorescenční mikroskop Prof. Hozák/Leica/Nikon (2)/ Zeiss (1,3)/ Dr. O. Šmíd (4)/ Mgr. A. Kalendová (5) Dr. Dulebo MTM lunch workshop Dr. Kubínová a Dr. Janáček Segmentace obrazu Dr. Čapek oběd oběd Demonstrace (5 skupin) 1) sondový mikroskop (AFM) 2) konfokální mikroskop a sledování pohybu GFP značeného proteinu v živé buňce Demonstrace (5 skupin) 1) demonstrace TEM 2) HPF, FS a ultramikrotomie 3) EM imunoznačení: detekce klastrování a kolokalizace Praktika (3 skupiny): 14.00-17.15 1) zpracování obrazu 2) stereologické metody 3) metody hodnocení dat z konfokálního mikroskopu Demonstrace/praktika – pokračování 3) FRAP – mikroskopické pozorování 4) FRAP – stanovení difusní konstanty 5) TIRF mikroskopie Demonstrace/praktika – pokračování 1. sled: 14.00-15.45 4) získání a digitalizace obrazu v TEM 2. sled: 15.45 - 17.15 5) demonstrace SEM oběd Obrazová analýza a 3D vizualizace Dr. Janáček Příprava digitální fotodokumentace pro publikační účely Dr. Benada Ing. D. Novotný/Dr. A. Dulebo/Dr. T. Venit Prof. Hozák/Ing. J. Nebesářová (1)/Dr. (1) Dr. Petrášek/ Mgr. J. Fukalová (2)/ M. Sobol (2/)/Mgr. A. Filimoněnko (3)/ Mgr. E. Stejskalová (3,4)/ Mgr. A. Dr. O. Benada (4)/ Dr. O. Kofroňová (5) Kalendová (4)/ Dr. Horváth (5) Dr.Gerla (1)/ Dr. Radochová, Dr. Lhotáková, Mgr. Kubínová (2)/ Dr. Janáček, Mgr. Čerňavský, Dr. Čapek, Dr. Kubínová (3) ZHODNOCENÍ KURZU 15.30 – 15.45 Prof. Hozák ANOTACE PŘEDNÁŠEK A PRAKTIK Seřízení mikroskopu - Köhlerovo osvětlení (Zeiss) Seznámení účastníků s nastavením Köhlerova osvětlení. Fázový kontrast (Leica) V naší sekci můžeme teoreticky vysvětlit a prakticky procvičit: 1) Nastavení Koehlerova osvětlení. 2) Nastavení fázového kontrastu a porovnání se světlým polem. 3) Nastavení tmavého pole a porovnání se světlým polem. Cvičení budeme provádět na mikroskopu LEICA DM1000 s kamerou a monitorem. Fázový kontrast (Nikon) Nastavení fázového kontrastu při pozorování v procházejícím světle. Vysvětlení nastavení fázového kontrastu pomocí pozorovacího okulárového dalekohledu, praktické procvičení nastavení. Nastavení bez pozorovacího dalekohledu a jeho procvičení. Interferenční kontrast (Zeiss) Seznámení účastníků s nastavením interferenčního kontrastu. Výběr imunoznačení (Dr. Šmíd) Seznámení účastníků s principy výběru vhodných značených protilátek pro fluorescenční a elektronovou mikroskopii. Výběr značených protilátek pro fluorescenční a elektronovou mikroskopii. Přímé a nepřímé značení, výběr sekundárních protilátek, vícenásobné značení. Fluorescenční mikroskop (Mgr. Kalendová) Seznámení účastníků s konstrukcí a nastavením fluorescenčního mikroskopu. Pozorování živých a fixovaných buněk exprimujících fluorescenčně značené proteiny. Sondový mikroskop (AFM) (Dr. Dulebo, Dr. Venit) We will image living skin fibroblast cells in physiological media (in situ). We will demonstrate possibilities of combining both AFM and optical microscopy techniques in study live cell dynamics. We will also measure cell nanomechanical properties (stiffness and Young’s modulus) and demonstrate its local variation within an individual cell. Konfokální mikroskop a sledování pohybu GFP značeného proteinu v živé buňce (Dr. Petrášek) 1) Představení komponent konfokálního mikroskopu – cílem je demonstrovat, co je kde a jak je to sestaveno. 2) Nahlédnutí do rutinního fluorescenčního mikroskopu – každý uživatel se podívá na buňky tabáku exprimující mGFP5ER čili GFP targetované to lumen endoplasmatického retikula. 3) Představení software ovládání celého konfokálního systému – zde je akcent na to jasně ozřejmit, jak právě viděné buňky můžeme zobrazit pomocí konfokálního mikroskopu, tj. popíši optickou dráhu, použité lasery, metody výběru excitační a emisní oblasti. 4) Sejmutí obrazu v xy – základní mód představující onen kontrast oproti zamlženému obrázku, co je vidět v mikroskopu. Pěkně kontrastní struktury retikulární struktury ER. Cílem je ukázat správné nastavení obrázku, pozadi, napětí na fotonásobiči, pinhole, průměrování. 5) Sejmutí obrazu v xyz – nastavení horní a dolní meze snímání podél osy z. Složení maximální projekce a 3D obrazu. 6) Sejmutí obrazu v xyt – snímání pohybu GFP (rychlé pohyby membránových útvarů, přestavba retikulární sítě) v čase. Cílem je ukázat, jak zhruba je mikroskop rychlý, tj. kolik obrazů je schopen vykreslit za sekundu a jak lze tuto rychlost regulovat. FRAP – mikroskopické pozorování (Mgr. Stejskalová) FRAP na lidských buňkách exprimujících sestřihový protein konjugovaný s GFP. FRAP – stanovení difusní konstanty (Mgr. Kalendová) Ze vzorových dat pořízených během FRAP měření bude sestrojena křivka a vypočteny parametry včetně difúzní konstanty charakterizující tuto křivku. TIRF mikroskopie (Dr. Horváth) Vysvětlení principu TIRF mikroskopie. Porovnání TIRF-M s jinými světelně-mikroskopickými technikami. Demostrace TIRF-M zobrazování na živých buňkách. Demonstrace TEM (Ing. Nebesářová) Seznámení s prací na transmisním elektronovém mikroskopu. HPF, FS a ultramikrotomie (Dr. Sobol) Seznámení s využitím HPF (vysoko-tlakového mražení), FS (kryo-substituce) a ultramikrotomie pro přípravu biologických vzorků k elektronové mikroskopii. Vysvětlení praktických detailů využití vysokotlakového mražení a kryo-substituce pro zachování ultrastruktury a antigenů v biologických preparátech určených pro elektronovou mikroskopii včetně imunoelektronové mikroskopie. Vysvětlení prace s vysoko-tlakovým zamražovacím zařízením, kryo-substitučným zařízením, ultramikrotomem. EM imunoznačení: detekce klastrování a kolokalizace (Mgr. Filimoněnko) Seznámení účastníků s principy automatické detekce protilátek značených kovovými nanočásticemi na digitálních snímcích, porizených pomocí TEM, a následující statistické hodnocení patternu nanočástic pomocí software Ellipse. Detekce klastrování a kolokalizace nanočástic různých velikostí po imunoznačení na ultratenkých řezech. Získání a digitalizace obrazu v TEM (Dr. Benada) Záznam obrazu v TEM, film vs. digitální záznam, CCD kamery a jejich umístění v TEM, vady digitálního záznamu (on-line shading correction), kalibrace zvětšení v TEM. Demonstrace SEM (Dr. Kofroňová) Seznámení s prací na rastrovacím (skenovacím) elektronovém mikroskopu. Zpracování obrazu (Dr. Gerla) Praktické ukázky vybraných metod z oblasti zpracování obrazu. Ověření těchto postupů na různých obrazech na PC se zaměřením na postupy využitelné při zpracování digitálních snímků z mikroskopu. Obsah praktika: interpretace obrazové informace, převodní charakteristiky, práce s histogramem, aritmetické a logické operace, 2D konvoluční filtrace, flat-field korekce, průměrování obrazů, obarvení obrazu pomocí tzv. pseudobarev. Stereologické metody (Dr. Radochová, Dr. Lhotáková, Mgr. Kubínová) Praktická cvičení pro pochopení principů stereologických měření a zvládnutí jejich aplikace v různých oborech výzkumu: praktické vyzkoušení stereologických metod pro odhad objemu mozku krysy (Cavalieriho princip), pro odhad objemu a povrchu mrkve (Cavalieriho princip a metoda vertikálních řezů) a pro odhad počtu trojrozměrných částic (metoda disektoru). Metody hodnocení dat z konfokálního mikroskopu (Dr. Janáček, Mgr. Čerňavský, Dr. Čapek, Dr. Kubínová) Praktické ukázky měření stereologickými metodami na PC (bodová metoda, disektor, metoda vertikálních řezů, fakírská metoda), interakce s 3D objemovými daty, základní postupy úpravy dat a tvorba povrchové reprezentace 3D objektů. Praktické seznámení se speciálními technikami optické mikroskopie - dvoufotonová mikroskopie, SHG, optická projekční tomografie.
Podobné dokumenty
T oday ` sideaswillbecometomor row ` sworld
na základě preferencí uživatele. Aplikace na základě
aktualizací v reálném čase radí uživateli ohledně volby vhodného jídla nebo receptů. Nabízí asistenci při
tvorbě nákupního seznamu vhodných ingr...
Zadávací dokumentace k veřejné zakázce zadávané v otevřeném
(512x512px) v jednom fluorescenčním kanálu ve
dvou rozměrech (XY). (počet snímků 512x512px
za sekundu - frame per second - fps)
rychlost super-rezolučního snímání ve třech
dimenzích (XYZ). (čas pot...
Leica Návod DM1000/2000/2500/3000
Nastavení tuhosti
Pomocí levého kroužku (17.1) nastavíme otáčením tuhost ostření. POZOR! Povolení nesmí být příliš velké, aby
nedošlo k nechtěnému sjetí stolku se vzorkem.
Ceník Yamaha
Zesilovač 8x280W/4Ohm; 8x250W/40Ohm@100V - 2U, DANTE
Zesilovač 8x280W/4Ohm; 8x250W/40Ohm@100V - 2U, YDIF
Zesilovač 8x140W/4Ohm; 8x125W/40Ohm@100V - 2U, DANTE
Zesilovač 8x140W/4Ohm; 8x125W/40Ohm@100...
Tvorba modelu materiálu pro živé tkáně
Obr. 4.6 Zobrazení analyzované oblasti v HU jednotkách.
V horní části grafu (Obr. 4.6) se vypíše aritmetický průměr HU jednotek spolu se
směrodatnou odchylkou a v pravé části rozsah HU jednotek. Na...
Časopis - Beckman Coulter
Průtokový cytometr FC500 je vybaven pěti detektory pro fluorescence a dvěma detektory pro
měření optických vlastností buněk a částic. Optická
lavice přístroje je osazena jedním nebo dvěma lasery (48...
Výroční zpráva o činnosti a hospodaření za rok 2013
aktivuje RNAi. Popsali jsme evoluční a molekulární příčiny reaktivace RNAi
v myších vajíčkách a dokázali jsme, že během evoluce získal Dicer O
nepostradatelnou roli v jejich normálním fungování. Na...