Bakterie 1
Transkript
Barvení mikroorganismů; imerzní mikroskopie (teoretický úvod) Barvení mikroorganismů Pro barvení mikroorganismů se použivají zředěné vodné roztoky organických barviv : 1. Bazická barviva (soli, v nichž je barevnou složkou kationt) - např. krystalová violeť, genciánová violeť, methylénová modř, safranin, zásaditý fuchsin, vesuvin, malachitová zeleň. Používají se pro barvení bakterií nebo jader eukaryotických buněk. 2. Kyselá barviva (soli, v nichž je barevnou složkou aniont) - např. kyselina pikrová, eosin. Používají se pouze pro vybarvení cytoplazmy eukaryotních organismů. Intenzitu vybarvení bazickými barvivy zvyšuje zásaditá reakce prostředí, u kyselých barviv pak kyselá reakce prostředí. Některé chemické sloučeniny (např. fenol, anilin, kyselina chromová, tanin, Lugolův roztok) způsobují sytější a lepší vybarvení objektů - při používání těchto sloučenin hovoříme o moření. Barvící metody podle účelu : Jednoduché barvení - používáme jej, pokud potřebujeme rozlišit tvar buněk (např. cvičení Bakterie mléčného kvašení) Diferenciační barvení - slouží k rozlišení jednotlivých morfologických útvarů buňky prokaryotické i eukaryotické (př. jádro, spóry, vakuoly apod.) nebo chemických složek buňky (škrob, glykogen, tukové kapénky apod.) Diagnostické barvení - slouží jako jedna z metod při klasifikaci mikroorganismů. Nejpoužívanější je Gramovo barvení bakterií. Negativní barvení - používáme v případě, kdy potřebujeme zjistit nejen tvar ale i velikost buněk. Při běžných metodách barvení jednotlivé kroky postupu mohou velikost buněk výrazně měnit (např. fixace, působení chemikálií barviv). Při negativním barvení je barveno pouze pozadí, nikoli buňky. Buňky pak pozorujeme jako světlé útvary, které jsou patrné na barevně odlišeném pozadí. Pozn. Pro přípravu preparátů se používají čistá, odmaštěná podložní sklíčka (tuk odstraníme xylenem nebo benzenem nebo chromsírovou směsí; po řádném opláchnutí je vkládáme do odmašťovacích roztoků na několik hodin, potom ponoříme do ethanolu a následně opláchneme destilovanou vodou, usušíme a vyleštíme hadříkem) před použitím se sklíčko vždy ožehne z obou stran v plameni kahanu. Pro přípravu většiny barvených preparátů (zvláště barvení bakterií) je třeba objekty fixovat. Účelem fixace je usmrcení buněk (mrtvé buňky snáze přijímají barvivo) a lepší přilnutí buněk k podkladu, aby nebyly při barvení či oplachování odplaveny. Bakterie fixujeme nejčastěji plamenem, kvasinky a plísně většinou chemikáliemi (aceton, ethanol) neboť plamen výrazně mění jejich tvar. Fixace kvasinek a plísní se používá jen při některých speciálních barvících technikách. Není-li v návodu uvedeno, neprovádí se. Fixace plamenem - na plamenem protažené sklíčko přeneseme bakteriologickým očkem kulturu a provedeme nátěr (rezetřeme na plochu cca 2 cm2. Necháme na vzduchu oschnout. Pak sklíčko (nátěrem vzhůru) několikrát protáhneme plamenem kahanu a po vychladnutí barvíme. Imerzní mikroskopie Imerzní mikroskopie je často používanou metodou v mikrobiologii, kde pozorované objekty mají velmi malé rozměry. Užívá se pro zvýšení rozlišovací schopnosti. Mezi čočku objektivu a pozorovaný objekt se dává imerzní olej (oleum cedri = cedrový olej) - kapalina, jejíž index lomu je stejný jako index lomu skla, nedochází proto ke zkreslení tvarů a zvyšuje se ostrost pozorovaných objektů získáme věrný obraz. U velmi podrobných pozorování se používá dvojitá imerze (imerzní olej se dává i mezi čočku kondenzoru a sklíčko). Imerzní mikroskopii lze provozovat pouze u mikroskopu, který je vybaven imerzním objektivem (označen jedním, častěji dvěmi černými proužky). Postup : 1. Na obarvený suchý preparát bez krycího sklíčka kápneme kapku cedrového oleje 2. Preparát umístíme na stolek mikroskopu, zvolíme imerzní objektiv 3. Opatrně přibližejeme objektiv, až čočku namočíme do kapky oleje (sledujeme ze strany, pozor na proražení sklíčka) 4. Za pohlížení do okuláru velmi pomalu mikrošroubem oddalujeme objektiv. Sloupec kapaliny oleje mezi sklíčkem a čočkou se nesmí přerušit. Pokud jsme objektiv příliš oddálili, postup opakujeme (nikdy nepřibližujeme objektiv při pohlížení do okuláru, vždy kontrolujeme pohledem z boku). 5. Po skončení pozorování omyjeme objektiv, případně i stolek mikroskopu a kondenzor roztokem ethanolu. Stejně tak i sklíčko. Pokud prohlížíme s imerzí trvalé preparáty, dáváme imerzní olej na krycí sklo trvalého preparátu. Při omývání oleje z preparátu postupujeme opatrně, abychom trvalý preparát neznehodnotili. Nejčastější chyby : Nedostatečné osvětlení zorného pole (pracujeme s velkým zvětšením, kondenzor musí být v maximální horní poloze) Příliš „hrubé“ zaostřování - zaostřování makrošroubem, či příliš rychle mikrošroubem, zaostření objektu naše oko nepostřehne. Postup je třeba trpělivě opakovat. Pozor ! ! ! Nezapomínejte zvolit správnýobjektiv - černými proužky označený imerzní objektiv Literatura : Šilhánková, L. a kol : Návody pro laboratoře z mikrobiologie; SNTL Praha 1985 Praktické cvičení – Bakterie 1 Náležitosti protokolu z praktického cvičení: 1. Číslo protokolu, jméno zpracovatele, datum 2. Téma 3. Materiál a pomůcky (vč. literatury nebo internetových zdrojů, které užíváte) 4. Vypracování: popis postupu, obrázky (kreslíme tužkou) s popisem (pokud jde o mikroskopické preparáty nezapomeňte psát zvětšení, při kterém pozorujete), zjištění. Pokud je v protokolu víc dílčích úkolů, část vypracování se provádí u každého zvlášť 5. Závěr: shrnutí, zhodnocení výsledků, příp. odpovědi na otázky pokud jsou v zadání nějaké položeny. Pozn. z tématu bakterie odevzdá každý student jeden souborný protokol. K jednotlivým úkolům píše data pozorování. Úkol č. 1 - Pohyblivé bakterie z močůvky K přípravě preparátu použijte vzorek z jemné blanky, která se vytvoří na povrchu zředěné močůvky; odeberte kapátkem, přikryjte krycím sklíčkem. Povrchovou blanku tvoří vesměs jen šroubovitě vinuté baktérie spirily. Preparát mikroskopujte při velkém zvětšení a zaostřujte hlavně na okraj kapky, kam se baktérie stahují. Z j i š t ě n í: V preparátu je možno pozorovat aktivní pohyb baktérií Spirillum volutans; běžná baktérie odpadových vod znečištěných organickými zbytky se pohybuje v kapce pomocí bičíků - viz obrázek. Jaký význam mají bakterie v močůvce? Vyhledej na internetu název některé z dalších bakterií, které mají v přírodě podobný význam jako Spirillum volutans. Je tato bakterie nějak prospěšná i člověku? Úkol č. 2 Negativní barvení bakterií z močůvky Provedení : Na odmaštěné podložní sklo kápneme malé množství tuše zředěné destilovanou vodou 1:2. V této kapce dobře rozmícháme malé množství bakterií. Hranou dalšího podložního skla rozetřeme suspenzi po celé ploše a necháme volně na vzduchu zaschnout.NEFIXUJEME! Pozorujeme pod imerzí při zvětšení 1000x Výsledek: zapíšeme a zakreslíme do protokolu
Podobné dokumenty
Bakterie II. - jednoduché a negativní barvení
methylenovou modří, oba preparáty nechte zaschnout na vzduchu a pozorujete bez krycího skla na největší zvětšení. Zakreslete tvary
bakterií.
3. Pozorování šroubovitých bakterií Spirillum volutans z...
Návod bakterie 2
poranění dásní) a provedeme nátěr na ožehnuté podložní sklíčko (nátěr provádíme párátkem,
jímž jsme povlak seškrábli). Necháme na vzduchu vyschnout, fixujeme plamenem (několikrát
protáhneme plamene...
Stavba stonku VI. - mezofyty - Praktický průvodce mikrosvětem I.
Měsíček lékařský (Calendula officinalis) – Příčný řez stonkem. Vitální preparát barvený
floroglucinolem. Mikroskop LP 3012-T; objektiv 4/okulár 10 + kamera CMOS 2
BENTONITY V KLASICKÝCH A MODERNÍCH APLIKACÍCH
V PSP Slévárně a.s., Přerov používají zde 3 typy formovacích
směsí:
pojené jílovými pojivy (bentonity) - odlitky do hmotnosti 500 kg
s vodním sklem vytvrzované CO2 - odlitky až do hmotnosti 18 - 20...
Makromycety III. - výtrusy - Praktický průvodce mikrosvětem I.
Připravte nativní preparát podle návodu v úkolu č. 1 nebo použijte preparát v této úloze zhotovený. Na krycí sklíčko preparátu
kápněte kapku imerzního oleje. Preparát umístěte na stolek mikroskopu,...
Téma: HISTOLOGIE I.
Úkol č. 2: Srovnání svrchní a spodní epidermis listu podeňky
Pomůcky: mikroskop, preparační sada, rostlinný materiál: vitální listy podeňky (Tradescantia), případně kosatce
německého (Iris germania...
Produktové informace: DSCRX100.CEE8
f = 28 až 100 mm
iAuto: AF (Š: přibl. 5 cm (0,16') až nekonečno,
T: přibl. 55 cm (1,80') až nekonečno) / Program
Auto: AF (Š: přibl. 5 cm (0,16') až nekonečno, T:
přibl. 55 cm (1,80') až nekonečno)